顺式-4,7,10,13,16,19-二十二碳六烯酸（CAS: 6217-54-5），简称DHA（二十二碳六烯酸），是一种高度不饱和的ω-3多不饱和脂肪酸（PUFA），在生物膜结构、神经发育和心血管健康中发挥关键作用。该化合物常从海洋生物如鱼油或藻类中提取，其天然来源中伴随多种其他脂肪酸和杂质，因此分离纯化是工业生产和研究中的核心步骤。纯化技术需考虑DHA的化学不稳定性（如易氧化）和热敏性，通常结合物理、化学和色谱方法实现高纯度（>95%）产品。下面将从化学专业视角概述常见分离纯化策略，强调原理、操作要点及优缺点。
1. 初步提取与预处理
DHA的分离纯化通常从脂质来源开始，如鱼油或微藻油。这些原料富含甘油三酯形式的多不饱和脂肪酸。首先，通过碱催化酯交换（transesterification）将甘油三酯转化为脂肪酸甲酯（FAME），便于后续分离。该过程使用甲醇和氢氧化钠或氢氧化钾作为催化剂，在温和条件下（40-60°C）进行，避免DHA氧化。
预处理步骤包括：
脱胶与脱酸：使用磷酸或柠檬酸去除磷脂和游离脂肪酸，防止乳化干扰。
冬化（Winterization）：将粗提取物置于低温（-20°C至-40°C）下，沉淀饱和脂肪酸和单不饱和脂肪酸（如棕榈酸、油酸），然后过滤得到富含不饱和脂肪酸的精制油。
分子蒸馏：在高真空（<0.1 Pa）和低温（<100°C）下分离挥发性组分，进一步浓缩PUFA馏分。
这些步骤可将DHA含量从原始原料的5-20%提高到30-50%，为精细纯化奠定基础。但需注意添加抗氧化剂（如α-生育酚或BHT）以保护双键。
2. 尿素络合析出法（Urea Complexation）
尿素络合是一种经典、低成本的分离技术，适用于区分饱和/单不饱和脂肪酸与多不饱和脂肪酸。原理基于尿素与直链饱和烃的氢键络合形成晶体结构，而支链或不饱和链（如DHA的六个顺式双键）难以络合。
操作流程：
- 将粗FAME混合物溶于甲醇或乙醇中，加入等摩尔尿素（尿素:脂肪酸摩尔比1:1至2:1）。
- 在室温或低温（0-5°C）下搅拌12-24小时，形成尿素-饱和脂肪酸络合物沉淀。
- 过滤分离沉淀，上清液富含PUFA，包括DHA（纯度提升至40-60%）。
- 络合物可用热水分解回收尿素和饱和脂肪酸。
优点：简单、经济、无需昂贵设备；缺点：对DHA的选择性有限，常需与其他方法联用。纯度通常达70-80%，适用于初步富集。
3. 低温结晶与银离子络合法
低温结晶
针对DHA的低熔点（约-44°C）和差异化溶解度，低温结晶可进一步分离不饱和脂肪酸。过程在惰性氛围下进行：
- 将PUFA馏分溶于己烷或石油醚中，冷却至-70°C以下，DHA等高度不饱和酸保持溶解，而较不饱和的EPA（二十碳五烯酸）等易结晶析出。
- 多次结晶循环可将DHA纯度提高至90%以上。
此法依赖溶剂选择和温度控制，需监控氧化副产物。
银离子络合（Silver Ion Coordination）
银离子（Ag+）与双键络合，形成可分离的复合物，特别适用于顺式双键的几何异构体分离。
- 使用硝酸银或银 triflate 在极性溶剂（如乙腈）中处理FAME，DHA的多个双键增强络合亲和力。
- 通过柱色谱或液-液萃取分离络合物，加热或添加氨水解络恢复DHA。
- 纯度可达95%，但银盐回收复杂，且成本较高。
此技术常用于实验室规模纯化，工业中与超临界萃取结合。
4. 色谱分离技术
色谱法是DHA纯化的高精度手段，尤其正相和反相HPLC。
银离子亲和色谱（Ag+ HPLC）
- 固定相：硅胶负载银离子，选择性吸附顺式双键。
- 流动相：己烷/乙腈梯度洗脱，DHA因双键数多而滞留时间长，后洗脱收集。
- 检测：UV（210 nm）或折光仪，纯度>98%。
超级临界流体色谱（SFC）
使用CO2作为流动相，结合反相柱（如C18），在温和条件（40-60°C，10-30 MPa）下分离。DHA的极性匹配允许高效分辨与其他ω-3酸。工业SFC可连续处理吨级原料，纯度达99%。
色谱法的优势在于高选择性和纯度，但设备投资大，适用于高端产品如营养补充剂。
5. 酶法与新兴技术
生物酶催化（如脂酶）可特异性水解DHA富集的甘油三酯，实现立体选择性分离。随后通过分子蒸馏纯化。
新兴方法包括：
膜分离：超滤或纳滤膜基于分子大小和极性分离PUFA，绿色环保但通量有限。
模拟移动床色谱（SMB）：连续色谱系统，提高工业效率，用于大规模DHA生产。
挑战与优化建议
DHA纯化面临氧化、异构化和成本挑战。双键易受光、热、氧影响，导致过氧化物形成，故全程使用氮气保护并监测过氧化值（PV<5 meq/kg）。异构化（如反式双键）可通过银离子法避免。工业优化聚焦于联用技术，如尿素析出+低温结晶+SFC，实现>95%纯度，产量>1 kg/h。
从化学角度，纯DHA常以甘油酯或乙酯形式储存，NMR和GC-MS用于验证纯度（¹H-NMR确认双键位置，GC确认链长）。这些技术不仅提升DHA在制药和食品领域的应用，还推动可持续来源如转基因酵母的开发。
总之，DHA分离纯化是多学科融合的过程，选择方法取决于规模和纯度需求。专业操作需严格控制条件，确保产品稳定性和生物活性。